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      • 髓過氧化物酶活性檢測試劑盒 抗逆
      產品名稱:

      髓過氧化物酶活性檢測試劑盒 抗逆

      產品品牌: SOLARBIO/索萊寶 價格:
      廠商性質: 生產廠家 產品時間: 2024-04-23
      有效期
      6個月
      儲存條件
      2-8℃
      中文名稱
      髓過氧化物酶活性檢測試劑盒 抗逆
      單位

      英文名稱
      Myeloperoxidase(MPO)Activity Assay kit
      檢測方法
      可見分光光度法
      規(guī)格
      50T/24S

      產品概述

      品牌SOLARBIO/索萊寶CAS詳詢
      分子式詳詢純度詳詢
      分子量詳詢貨號BC5710
      規(guī)格50T/24S供貨周期現(xiàn)貨
      主要用途髓過氧化物酶活性檢測應用領域環(huán)保,化工,生物產業(yè),農林牧漁,綜合

      髓過氧化物酶(MPO)活性檢測試劑盒說明書

      可見分光光度法

      貨號:BC5710

      規(guī)格:50T/24S

      產品組成:使用前請認真核對試劑體積與瓶內體積是否一致,有疑問請及時聯(lián)系索萊寶工作人員。

      試劑名稱

      規(guī)格

      保存條件

      試劑一

      液體60 mL×1

      2-8℃保存

      試劑二

      粉劑×2

      2-8℃保存

      試劑三

      液體4 mL×1

      2-8℃保存

      試劑四

      液體1.5 mL×1

      2-8℃保存

      試劑五

      液體0.1 mL×1

      2-8℃保存

      試劑六

      液體1 mL×1

      2-8℃保存

      溶液的配制:

      1. 試劑二:臨用前取一瓶試劑二加入15mL試劑一,可37℃加熱促進溶解,2-8℃可保存2周;

      2. 試劑三:低溫下試劑會出現(xiàn)析出凝固現(xiàn)象,臨用前需37℃加熱至澄清透明狀態(tài);

      3. 工作液:臨用前根據(jù)樣本量按照試劑一:試劑四:試劑五=5.28mL220μL5.5μL5.5mL6S)的比例配制,現(xiàn)用現(xiàn)配。

      產品說明:

      髓過氧化物酶(myeloperoxidase, MPO)是一種由活化的中性粒細胞、單核-巨噬細胞分泌的白細胞酶,主要存在于中性粒細胞和單核-巨噬細胞的嗜苯胺藍顆粒中。當白細胞被激活后,MPO釋放到吞噬泡和血漿,在特定條件下誘導氧化應激和組織損傷,是系統(tǒng)炎癥和氧化應激的標志物。

      MPO催化H2O2分解,同時將鄰聯(lián)茴香胺氧化生成有色物質,在460nm處有特征吸收峰,顏色深淺與MPO活性成線性關系。

      注意:實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內建議稀釋或者增加樣本量進行檢測。

      需自備的儀器和用品:

      可見分光光度計、低溫離心機、分析天平、水浴鍋/恒溫培養(yǎng)箱、1mL玻璃比色皿、可調式移液槍、研缽/勻漿器/細胞超聲破碎儀、冰和蒸餾水。

      操作步驟:

      一、 樣本處理(可適當調整待測樣本量,具體比例可以參考文獻)

      1. 組織樣本:按質量(g):試劑二體積(mL=15~10比例加入試劑二(建議稱取0.1g樣本,加入1.0mL試劑二),冰浴勻漿后,于4℃12000g,離心10min,棄沉淀,取上清液置于冰上待測。

       

      2. 細胞樣本:按細胞數(shù)量(106):試劑二體積(mL=5~101的比例加入試劑二(建議5×106細胞加入1.0mL試劑二),冰浴超聲破碎細胞(功率200W,超聲3s,間隔7s,總時間3min),然后于4℃,12000g,離心10min,棄沉淀,取上清液置于冰上待測。

      3. 液體樣本:按液體體積(mL):試劑二體積(mL=11的比例加入試劑二(相當于稀釋2倍),混勻,于4℃,12000g,離心10min,棄沉淀,取上清液置于冰上待測。(若測定數(shù)值較小,可以調整比例進行前處理,例如213:1

      二、 測定步驟

      1.可見分光光度計預熱30min以上,調節(jié)波長至460nm,蒸餾水調零。

      2.2mL EP管按下表順序加樣:

      試劑名稱(μL

      測定管

      對照管

      樣本

      60

      60

      試劑三

      60

      60

      工作液

      900

      -

      蒸餾水

      -

      900

      混勻,37℃反應30min

      試劑六

      15

      15

      混勻,60℃反應10min,取1mL反應液于1mL玻璃比色皿中測定460nm處各管吸光值,分別記為A測定和A對照,計算ΔA=A測定-A對照。每個測定管需設置一個對照管。

      注:溫度較低時,反應液可能出現(xiàn)渾濁或凝固,此時需37℃加熱至反應液澄清透明方可進行測定。

      三、MPO活性計算

      1. 按樣本蛋白濃度計算

      單位的定義:每mg組織蛋白在37℃反應體系中每小時催化產生1μmol氧化型鄰聯(lián)茴香胺定義為一個酶活單位。

      MPO活性(U/mg prot=ΔA÷(ε×d)×V反總÷(Cpr×V) ÷T=3.053×ΔA÷Cpr

      2. 按樣本質量計算

      單位的定義:每g組織在37℃反應體系中每小時催化產生1μmol氧化型鄰聯(lián)茴香胺定義為一個酶活單位。

      MPO活性(U/g 質量)=ΔA÷(ε×d)×V反總÷(W÷V提取×V) ÷T= 3.053×ΔA÷W

      3. 按細胞數(shù)目計算

      單位的定義:每106個細胞在37℃反應體系中每小時催化產生1μmol氧化型鄰聯(lián)茴香胺定義為一個酶活單位。

      MPO活性(U/106 cell=ΔA÷(ε×d)×V反總÷(N÷V提取×V) ÷T= 3.053×ΔA÷N

      4. 按液體體積計算

      單位的定義:每mL液體在37℃反應體系中每小時催化產生1μmol氧化型鄰聯(lián)茴香胺定義為一個酶活單位。

      MPO活性(U/mL=ΔA÷(ε×d)×V反總÷V×F÷T=6.106×ΔA

      ε:氧化型鄰聯(lián)茴香胺消光系數(shù),11.3mL/μmol/cm;d:光徑,1cmV反總:反應總體積,1.035mL;V樣:加入樣本體積,0.06mL;V提?。航M織/細胞樣本處理時加入試劑二的體積,1mL;F:液體前處理稀釋倍數(shù),2;Cpr:樣本蛋白濃度,mg/mL;W:樣本質量,g;N:細胞數(shù)目,以106計;T:酶促反應時間,30min=0.5h。

      注意事項:

      1. 建議每次實驗前查看試劑二和試劑三是否澄清透明,若不澄清透明,需37℃加熱至溶液澄清透明方可使用。

       

      2. 如果?A小于0.01或測定管吸光值接近對照管,可以增加樣本量或者延長37℃酶促反應時間后再進行測定;如果?A測定大于0.5A測定大于1.5,建議將樣本勻漿后的上清液用試劑二適當稀釋后再進行測定。注意同步修改計算公式。

      實驗實例:

      1. 0.1029g小鼠肺臟樣本,加入1mL試劑二進行冰浴勻漿,離心后取上清,按照測定步驟操作,用1mL玻璃比色皿測得計算:ΔA=A測定-A對照=0.367-0.045=0.322,按樣本質量計算得:

      MPO活性(U/g 質量)=3.053×ΔA÷W = 9.554 U/g 質量。

      2. 4×106KB細胞,加入1mL試劑二進行冰浴超聲破碎,離心后取上清,按照測定步驟操作,用1mL玻璃比色皿測得計算:ΔA=A測定-A對照=0.050-0.000=0.050,按樣本細胞數(shù)目計算得:

      MPO活性U/106 cell=3.053×ΔA÷N = 0.038 U/106 cell

      3. 0.5mL馬血清樣本,加入0.5mL試劑二,混勻,離心后取上清,按照測定步驟操作,用1mL玻璃比色皿測得計算:ΔA=A測定-A對照=0.099-0.002=0.097,按液體體積計算得:

      MPO活性(U/mL=6.106×ΔA = 0.592 U/mL。

      參考文獻:

      [1] Bradley PP, Priebat DA, Christensen RD. et al. Measurement of cutaneous inflammation: estimation of neutrophil content with an enzyme marker [J]. The Journal of Investigative Dermatology, 1982, 78(3): 206-209.

      [2] Krawisz J E, Sharon P, Stenson W F. Quantitative assay for acute intestinal inflammation based on myeloperoxidase activity [J]. Gastroenterology, 1984, 87(6): 1344-1350.

      [3] Tatjana Momi?, Zoran Vuj?i?, Vesna Vasi?. Kinetics of inhibition of peroxidase activity of myeloperoxidase by quercetin [J]. International Journal of Chemical Kinetics, 2008, 40(7): 384-394.

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